Ausstattung
Das ibvt verfügt über einen flexiblen Gerätepark sowie ein breit angelegtes Methodenrepertoire, das die Brücke zwischen klassischen unit operations in der Verfahrenstechnik bis zu modernen molekularbiologischen Arbeitstechniken für die bioverfahrenstechnische Forschung spannt. Im Einzelnen gehören dazu:
Allgemeine Ausstattung für biologische und verfahrenstechnische Arbeiten
- Schüttelschränke, Zentrifugen, Waagen, Autoklaven, Kühlschränke, Pumpen, allgemeine Laborausstattung (Rührer, pH, Ansatzlabor, etc.)
- Elektronik- und Feinwerkstatt
Chemische und biochemische Analytik
- AAS, AOX, Fluoreszenzspektrometer, GC, GC-MS, HPLC, Photometer, TOC, BSB, CSB) usw.
Ausstattung zur Kultivierung von Pro- und Eukaryoten
- Biologische Laborausrüstung als Grundausstattung, inkl. Kultivierungseinheiten von 2 bis 20 L in unterschiedlicher Ausstattung mit Steuer- und Regelperipherie, Abluftanalytik für O2 und CO2 sowie 20 L-Kultivierungseinheit
Verfahrenstechnische Ausstattung zur Charakterisierung von mehrphasig betriebenen Chemie- und Bioreaktoren sowie Biofimsystemen
- Mehrphasenreaktoren bis in den halbtechnischen Maßstab (0,1 2 m3)
- Rührerversuchsstände, Blasensäulen- und Airlift-Schlaufenreaktoren, Reaktoren für die Hefeindustrie
- Versuchsstände zur reaktionskinetischen Untersuchung mikrobieller und chemischer Abbauprozesse sowie zur mikrobiellen und oxidativen Wasser-/ Abwasserbehandlung
- Lysimeter-Säulenreaktoren (0,2 m3) mit Messperipherie (pH, Leitfähigkeit) zur biologischen Abfallbehandlung
- Oxidationsreaktoren (Ozon/H2O2) mit Messperipherie (Ozonmessung in Gas- und Flüssigphase)
- Messtechnik zur Charakterisierung lokaler Phasengehalte: Time-Domain-Reflektometry, Leitfähigkeit, Differenzdruck
- Messtechnik zur Bestimmung von Strömungsstrukturen: Elektrodiffusionsmessung, Heissfilmanemometer, Mikrosondentechnik
- Messtechnik zur Untersuchung fluiddynamisch induzierter mechanischer Beanspruchungen: Couette-Scherapparatur, in situ Partikelgrößenanalyse (inline; off-line), mikroskopische Bildanalyse
- Rheometer
- Mikroelektrodenversuchstand zur Sauerstoffmessung
- Ausstattung zur Charakterisierung der Vermeidung von Biofilmbewuchs und Abtrag von Biomasse aus Biofilmen
- Biofilm-Modellierung (Aquasim, Predici (CiT) und Matlab/Simulink)
- Konfokale Laser Scanning Mikroskopie (Nutzung über einen Forschungskooperationsvertrag mit dem Umweltforschungszentrum (UFZ) Leipzig-Halle, Magdeburg, Dr. Neu)
- LINUX-Cluster Typ hpcLine Intel Xeon (Fujitsu Siemens): Twin Basiseinschub mit 8 x intel 2,4 GHz Prestonia Prozessoren (entsprechend 16 Knoten), 340 GB HDD, 2 GB RDRAM, Betriebssystem RedHat
- Modellierungswerkzeuge für die Mehrphasensimulation: Ansys CFX
Ausstattung für die Systembiotechnologie mikrobieller Produktionsprozesse
- Transkriptom: PCR (realtime und nicht-realtime-Anwendungen) mRNA-Qunatifizierung, PCR-Werkbank (Reinstarbeiten für mRNA-Quantifizierung und Microarray-Technologie, Zellaufschlussgeräte: French-press, Mörsermühlen
- Ultraschall-Desintegrator, Mikrotom-Schneidegerät
- Proteomaufreinigung und identifizierung: 2D-Gelelektrophorese, Fluoreszenz-Gelscanner, Concentrator, Taumeltisch für Gelfärbung, Gel- Auswertesoftware, UV-Lichttisch, HPLC, UV- und Differential-Refraktometer, Mikro- und Ultrafiltrationseinheit zur Aufkonzentrierung
- Metabolom (Online-Massenspektrometer zur Metabolom-Flussanalyse (Kompaktgerät mit Kapillare, Vakuumerzeugung, Software zur Auswertung der Spektren, Y/I-Kathode, 13C, GC-MS)
- Environom (HPLC, TOC, Fluoreszenzspektrometer u. a.)
- metabolische Flussanalyse, Stoffwechselnetzwerk-Analyse und -Modellierung (Matlab/Simulink), populationsdynamische Modellierung mit Programmpaket Parsival (CiT)
Responsible:
Katina Kiep
Feedback to k.kiep@tu-braunschweig.de
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